Lista de especies y clave ilustrada de los géneros de Phasmatodea (Insecta) de México

Checklist and illustrated key of the Phasmatodea (Insecta) genera from Mexico

 

Tabla 1

Esta lista de especies sigue la clasificación propuesta en Brock y Marshall (2011). La ubicación de Hypocyrtus Redtenbacher, 1908 se efectuó de acuerdo con Hennemann et al. (2016) y con base en la lista obtenida en Brock et al. (2016).

Orden Phasmatodea Jacobson & Bianchi, 1902
	Suborden Timematodea Kevan, 1982
		Familia Timematidae Caudell, 1903
			Subfamilia Timematinae Caudell, 1903
				Tribu Timematini Caudell, 1903
					Género Timema Scudder, 1895
						Timema nakipa Vickery, 1993
						Timema podura Strohecker, 1936
	Suborden Verophasmatodea Zompro, 2004
		Familia Diapheromeridae Kirby, 1904
			Subfamilia Diapheromerinae Kirby, 1904
				Tribu Diapheromerini Kirby, 1904
					Género Bacteria Berthold, 1827
						Bacteria aetolus Westwood, 1859
						Bacteria foliolata Redtenbacher, 1908
						Bacteria frustrans Redtenbacher, 1908
						Bacteria horni Redtenbacher, 1908
						Bacteria nova Redtenbacher, 1908
						Bacteria quadrispinosa Redtenbacher, 1908
						Bacteria reclusa (Brunner von Wattenwyl, 1907)
					Género Bostra Stål, 1875
						Bostra jaliscensis Rehn, 1904
						Bostra margaritata Redtenbacher, 1908
						Bostra procoppi Redtenbacher, 1908
						Bostra saussurei Redtenbahcer, 1908
						Bostra similis Redtenbacher, 1908
						Bostra tridenticulata Redtenbacher, 1908
					Género Diapheromera Gray, 1835
						Diapheromera (Diapheromera) calcarata (Burmeister, 1838)
						Diapheromera (Diapheromera) erythropleura Hebard, 1923
						Diapheromera (Diapheromera) femorata (Say, 1824)
						Diapheromera (Diapheromera) kevani Vickery, 1997
						Diapheromera (Diapheromera) nitens Brunner von Wattenwyl, 1907
						Diapheromera (Diapheromera) petita Vickery, 1997
						Diapheromera (Diapheromera) tamaulipensis Rehn, 1909
						Diapheromera (Diapheromera) velii velii Walsh, 1864
						Diapheromera (Diapheromera) velii eucnemis Hebard, 1937
						Diapheromera (Rhabdoceratites) beckeri Kaup, 1871
						Diapheromera (Rhabdoceratites) covilleae Rehn & Hebard, 1909
					Género Megaphasma Caudell, 1903
						Megaphasma denticrus (Stål, 1875)
						Megaphasma furcatum (Brunner von Wattenwyl, 1907)
					Género Phanocles Stål, 1875
						Phanocles burkartii (Saussure, 1868)
						Phanocles zehntneri (Redtenbacher, 1908)
					Género Pseudosermyle Caudell, 1903
						Pseudosermyle carinulata (Brunner von Wattenwyl,1907)
						Pseudosermyle chorreadero Conle, Hennemann & Fontana, 2007
						Pseudosermyle claviger Conle, Henneman, & Fontana, 2007
						Pseudosermyle elongata (Brunner von Wattenwyl, 1907)
						Pseudosermyle godmani (Brunner von Wattenwyl, 1907)
						Pseudosermyle incongruens (Brunner von Wattenwyl, 1907)
						Pseudosermyle inconspicua (Brunner von Wattenwyl, 1907)
						Pseudosermyle neptuna (Brunner von Wattenwyl, 1907)
						Pseudosermyle olmeca (Saussure, 1870)
						Pseudosermyle phalangiphora (Rehn, 1907)
						Pseudosermyle procera Conle, Hennemann & Fontana, 2007
						Pseudosermyle striatus (Burmeister, 1838)
						Pseudosermyle strigiceps (Kaup, 1871)
						Pseudosermyle tolteca (Saussure, 1859)
						Pseudosermyle tridens (Burmeister, 1838)
					Género Sermyle Stål, 1875
						Sermyle bidens (Kaup, 1871)
						Sermyle elegantior (Brunner von Wattenwyl, 1907)
						Sermyle mexicana (Saussure, 1859)
						Sermyle saussurei Stål, 1875
				Tribu Ocnophilini Günther, 1953
					Genero Dubiophasma Zompro, 2001
						Dubiophasma longicarinatum Zompro, 2001
					Género Ocnophila Brunner von Wattenwyl, 1907
						Ocnophila ciliata Brunner von Wattenwyl, 1907
						Ocnophila submutica Brunner von Wattenwyl, 1907
		Familia Phasmatidae Leach, 1815
			Subfamilia Cladomorphinae Brunner von Wattenwyl, 1893
				Tribu Hesperophasmatini Bradley & Galil, 1977
					Género Hypocyrtus Redtenbacher, 1908
						Hypocyrtus postpositus Redtenbacher, 1908
						Hypocyrtus scythrus (Westwood, 1859)
	Superfamilia Aschiphasmatoidea Brunner von Wattenwyl, 1893
		Familia Prisopodidae Brunner von Wattenwyl, 1893
			Subfamilia Prisopodinae Brunner von Wattenwyl, 1893
				Tribu Prisopodini Brunner von Wattenwyl, 1893
					Género Prisopus Peletier de Saint Fargeau & Seville, 1827
						Prisopus berosus Westwood, 1859
	Superfamilia Pseudophasmatoidea Rehn, 1904
		Familia Heteronemiidae Rehn, 1904
			Subfamilia Heteronemiinae Rehn, 1904
				Tribu Heteronemiini Rehn, 1904
					Género Heteronemia Gray, 1835
						Heteronemia contracta (Brunner von Wattenwyl, 1907)
						Heteronemia foliata (Brunner von Wattenwyl, 1907)
						Heteronemia forcipata (Brunner von Wattenwyl, 1907)
						Heteronemia oaxacae Hebard, 1932
						Heteronemia unidentatus (Brunner von Wattenwyl, 1907)
				Tribu Paraleptyniini Zompro, 2004
					Género Parabacillus Caudell, 1903
						Parabacillus coloradus (Scudder, 1893)
						Parabacillus palmeri (Caudell, 1902)
		Familia Pseudophasmatidae Rehn, 1904
					Género Perlioides Redtenbacher, 1906
						Perlioides nigrogranulosus Redtenbacher, 1906
			Subfamilia Pseudophasmatinae Rehn, 1904
				Tribu Anisomorphini sensu Bradley & Galil, 1977
					Género Anisomorpha Gray, 1835
						Anisomorpha paromalus Westwood, 1859
					Género Autolyca Stål, 1875
						Autolyca elena Gorochov & Berezin, 2008
						Autolyca pallidicornis Stål, 1875

 

Tabla 2

Glosario de términos empleados en la clave de los géneros de Phasmatodea que aquí se presenta.

Alas anteriores: el primer par de alas por lo general son tegminas (fig. 20).

Alas posteriores: el segundo par de alas, en su mayoría son membranosas, con una amplia región anal (fig. 20).

Ángulo opercular: el ángulo que el opérculo de un huevo forma con el eje longitudinal, este puede ser negativo o positivo (fig. 4B).

Antenómero: cada uno de los artículos o artejos que conforman la antena. El primero se denomina escapo, el segundo pedicelo y el resto son los flagelómeros (fig. 4C, D).

Área apicalis: superficie casi triangular en la superficie ventral del ápice de las tibias.

Basitarso: el primer tarsómero en una pata (fig. 21).

Capítulo: estructura membranosa que puede removerse del opérculo sin ningún daño y que, al sumergirse en una solución de hidróxido de sodio, se ablanda y ensancha; contrario a las demás estructuras del opérculo que se mantienen rígidas. En algunas especies contiene un centro sólido.

Cápsula del huevo (corion): es la parte más externa del huevo, el exocorion (fig. 22).

Carina (Carinas): proyección longitudinal y estrecha o línea en relieve, que en general se encuentra a lo largo de las patas o la línea central del cuerpo (fig. 15B).

Collar: la parte de la cápsula del huevo (corion) en forma de tira o banda que rodea al opérculo (fig. 22).

Dentado: que posee varios dientes (fig. 14B).

Diente: una proyección en la cual la altura es mayor que su diámetro; una espina corta y roma (fig. 14B).

Dorso-anterior carina (carinas): carina en la parte frontal, en el extremo superior del fémur o la tibia.

Dorso-posterior carina (carinas): carina en la parte posterior, en el extremo superior del fémur o la tibia.

Eje altitudinal: eje a lo alto del huevo (corion) en dirección ‘dorso-ventral’, con el cual se obtiene la altura del corion (fig. 4B).

Eje de altitud opercular: eje a lo alto del opérculo, en dirección dorso-ventral, con el cual se obtiene la altura del opérculo (fig. 4B).

Eje de amplitud: eje a lo ancho del huevo (corion), en dirección izquierda-derecha, con el cual se obtiene el ancho del corion (fig. 4A).

Eje de amplitud micropilar: eje a lo ancho de la lámina micropilar, en dirección izquierda-derecha, con el cual se obtiene el ancho de la lámina micropilar (fig. 4A).

Eje de amplitud opercular: eje a lo ancho del opérculo, en dirección izquierda-derecha, con el cual se obtiene el ancho del opérculo (fig. 4A).

Eje de longitud micropilar: eje a lo largo de la lámina micropilar, en dirección antero-posterior, con el cual se obtiene el largo de la lámina micropilar (fig. 4A).

Eje longitudinal: eje a lo largo del huevo (corion), en dirección antero-posterior, con el cual se obtiene la longitud del corion y que se utiliza como punto de referencia para obtener el ángulo opercular (fig. 4B).

Escabroso: áspero, irregular y levemente rugoso, posee cortas y afiladas proyecciones o arrugas.

Gránulo: grano pequeño o elevación pequeña parecida a un grano.

Granuloso: cubierto con gránulos pequeños, generalmente circulares y su altura es menor que su diámetro.

Lámina micropilar: área de la superficie dorsal de la cápsula del corion, usualmente distinguible del resto de la superficie de la cápsula (fig. 22).

Lóbulo: tipo de tubérculo que está un poco comprimido, también se llama así a las proyecciones redondeadas que pueden tener las carinas.

Lobulado: provisto de lóbulos, en general se los encuentra en fila a lo largo de una carina.

Meso-ventral carina (carinas): carina en el centro de la superficie ventral del fémur o la tibia.

Mesobasitarso: primer tarsómero del segundo par de patas.

Mesocoxas: coxas del segundo par de patas.

Mesofémures: fémures del segundo par de patas.

Mesopatas: segundo par de apéndices locomotores, proviene del mesotórax (fig. 20).

Mesotibias: tibias del segundo par de patas.

Metabasitarso: primer tarsómero del tercer par de patas.

Metacoxas: coxas del tercer par de patas.

Metafémures: fémures del tercer par de patas.

Metapatas: tercer par de apéndices locomotores, se forma a partir del Metatórax (fig. 20).

Metámero: cada uno de los segmentos que conforman a los insectos; en el abdomen se numeran utilizando los números romanos (I, II, III,., IX, X, XI), empezando del que se encuentra unido al metatórax. En insectos palo al primer metámero abdominal (I) se le llama también segmento medio (median segment); al décimo metámero (X) se le llama segmento anal (anal segment).

Metatibias: tibias del tercer par de patas.

Micrópilo: orificio del corion por el cual entra el espermatozoide para fecundar el huevo (fig. 22).

Opérculo: estructura del corion, normalmente anterior, a manera de tapa, mediante la cual eclosiona la ninfa (fig. 22).

Órgano preopercular: órgano que exhiben las hembras de algunas especies en el VII esternito; se utiliza durante la cópula. Usualmente compuesto por una o más protuberancias, crestas o solapas (fig. 3B, C).

Pata: cada uno de los apéndices locomotores pareados del tórax. Tienen tres pares (fig. 20).

Placa subgenital: VIII esternito en las hembras, cubre la abertura genital. Puede cubrir ventralmente al IX y X metámeros e incluso llega a sobresalir de este último. También llamada lámina subgenital (fig. 23).

Placa supraanal: XI tergito abdominal, ausente en machos y visible en algunas hembras (fig. 23).

Poculum (Pocula): la cubierta de la abertura genital del macho: IX esternito (fig. 23).

Probasitarso: el primer tarsómero del primer par de patas.

Procoxas: las coxas del primer par de patas.

Profémures: los fémures del primer par de patas.

Propatas: primer par de apéndices locomotores, provienen del protórax (fig. 20).

Protibias: las tibias del primer par de patas.

Pseudocapitulum: todas las estructuras del opérculo que no reaccionan al tratamiento (ver capítulo).

Ruguloso: finamente arrugado.

Rugoso: arrugado; cubierto con pequeñas crestas o arrugas.

Setoso: cubierto con sedas.

Tuberculoso: cubierto de tubérculos.

Tubérculo: estructura en forma de bulto, roma o irregular, por lo regular pequeñas, aunque también se utiliza para referirse a estructuras grandes (v. gr. verrugas) y de forma irregular.

Verruga: protuberancia redonda y de superficie irregular.

Verrugoso: cubierto por lóbulos irregulares o protuberancias parecidas a verrugas.

Ventro-anterior carina (carinas): carina en la parte anterior, en el extremo inferior del fémur o la tibia.

Ventro-posterior carina (carinas): carina en la parte posterior, en el extremo inferior del fémur o la tibia.

Vómer: esclerosamiento móvil en el esternito X del macho, normalmente de forma triangular; lo utiliza durante la cópula (fig. 3A).

 

(1902, 1903), Kirby (1904), Rehn (1904a, b), Redtenbacher (1906, 1908), Brunner von Wattenwyl (1907), Vickery (1993), Zompro (2001a, b), Conle y Hennemann (2002), Arment (2006), Conle et al. (2007) y Hennemann y Conle (2012b). Recabada esta información se compararon y caracterizaron cada uno de los géneros.

A partir de la bibliografía se ilustró la clave con una serie de imágenes fotográficas de ejemplares de la CNIN (Colección Nacional de Insectos del Instituto de Biología, UNAM) y se efectuaron algunos esquemas. Las ilustraciones de los huevos fueron tomadas con una cámara de 8MP LEICA DFC490, adaptada a un microscopio LEICA Z16 AP0A y obtenidas con Leica Application Suite. El procesamiento de las ilustraciones se llevó a cabo con el empleo de Adobe Photoshop CC 2014. Las ilustraciones de ejemplares fueron tomadas con una cámara Nikon D700 de 12.1 megapixeles, con un lente Nikon AF-S VR Micro-Nikkor 105 mm f/2.8G IF-ED, y luego procesadas con GIMP 2.8 2012. Algunas imágenes fueron tomadas de Brock et al. (2016) y pertenecen a Paul de Brock copyright NMW de Viena y copyright USNM, Washington.

Los esquemas se realizaron con base en las fotografías tomadas en la CNIN, así como las imágenes obtenidas de Brock et al. (2016) y diversos esquemas obtenidos en la literatura siguiente: Zompro (2001a), Conle y Hennemann (2002) y Hennemann y Conle (2012b), los cuales se procesaron con GIMP 2.8 2012. Los organismos ilustrados se escogieron con el siguiente orden de prioridad: 1, especie que se distribuye en México y que presente buenas ilustraciones; 2, especie tipo del género y 3, cualquier especie perteneciente al género aunque no habite en México y se tuviera acceso para obtener
fotografías.

Para la elaboración del glosario (tabla 2) se consultaron los trabajos de Clark (1976a, b, 1979) y Sellick (1997a, b, 1998), quienes definieron la terminología apropiada para la descripción de los huevos de los insectos palo. También se consideró el trabajo de Bragg (1997), quien elaboró el primer glosario de términos empleados en el orden Phasmatodea. Posteriormente se efectuaron las equivalencias a los términos y sus definiciones al español. Las definiciones se representaron con las imágenes utilizadas en la clave de determinación taxonómica.

Resultados

A continuación, se presenta la lista de las especies (tabla 1).

Clave para los géneros de Phasmatodea de México. Se presenta una clave provisional; en paréntesis se indican las láminas y figuras correspondientes al término morfológico señalado (v. gr. fig. FX, Y) donde X es el número de figura que puede ser del 1 al 19 y Y la imagen correspondiente en esa figura. Dado el dimorfismo sexual que llega a presentarse en este grupo, es conveniente presentar claves para ambos sexos. Al final se presenta una clave para los subgéneros de Diapheromera.

Machos:

1. Tres tarsómeros en cada pata (fig. 1C), I metámero abdominal no fusionado al tórax Timema

1′. Cinco tarsómeros en cada pata (fig. 1D), I metámero abdominal fusionado al tórax 2

2. Alados (fig. 11A) o braquípteros 3

2′. Ápteros (fig. 9A; fig.15A; fig. 16A; fig 18A) 5

3. Primer par de alas como tegminas y segundo par de alas bien desarrollado (fig. 2A, B ) 4

3′. Primer y segundo par de alas reducidos a escamas Hypocyrtus

4. Tórax más ancho que largo, fémures deprimidos y dentados en el borde (fig. 12A), últimos metámeros abdominales con proyecciones laterales (fig. 6C; fig. 11B, C; fig. 12A, B) Prisopus

4′. Tórax más largo que ancho, con gránulos en líneas y fémures cilíndricos Perliodes

5. Cuerpo robusto (fig. 9A), pronoto con glándulas defensivas en el margen anterior (fig. 1B) 6

5′. Cuerpo delgado (fig. 15A; fig. 16A; fig. 18A), pronoto sin glándulas defensivas evidentes (fig. 1A) 7

6. Profémures deprimidos y curvados basalmente, poculum pequeño, no convexo (fig. 5A); basitarso ligeramente más largo que el segundo tarsómero Anisomorpha

6′. Profémures más o menos rectos, no deprimidos basalmente; tergito IX con lóbulos posterolaterales parecidos a fórceps (fig. 5C; fig 9C) Autolyca

7. Antenas más cortas que profémur, flagelo con 4 o 5 antenómeros fusionados (fig. 4D) Parabacillus

7′. Antenas más largas que el profémur, flagelo con más de 4 o 5 antenómeros no fusionados (fig.4C) 8

8. Vértex y tórax granulosos, poculum protuberante (fig. 7G) Ocnophila

8′. Vértex liso (fig. 15B; fig. 16B) o carinado (fig. 18B) o con dos protuberancias entre los ojos, tórax liso (fig. 16A) o granuloso, o con una carina media no muy notoria 9

9. Con vómer (fig. 3A; fig. 15C) 10

9′. Sin vómer (fig. 18F) 13

10. Metámero I más largo que la mitad del metatórax, cabeza con dos tubérculos, espinas o lóbulos semi-
triangulares 11

10′. Metámero I más corto que la mitad del metatórax, cabeza sin ornamentación (fig. 15B) Bacteria

11. Cabeza subglobosa 12

11′. Cabeza deprimida Heteronemia

12. IX con márgenes laterales amplios, I tan largo como el metatórax Bostra

12′. IX estrecho en la parte posterior, I más largo que el metatórax Phanocles

13. Meso y/o metafémures con una o varias espinas ventroapicales prominentes (fig. 16C, D), cuerpo liso y brillante fig. 16A) 14

13′. Meso y metafémures sin espinas ventroapicales prominentes, cuerpo liso y opaco (fig. 18A) 15

14. Mesofémures ensanchados (fig. 16A, C), cabeza prognata (fig. 16B), cercos simples (fig. 8G), alargados (fig. 16E, F) y curvados hacia adentro (fig. 16F) Diapheromera (clave de subgéneros)

14′. Meso y metafémures ensanchados, cabeza ortognata y globosa, cercos alargados, espatulados o furcados
(fig. 8E) Megaphasma

15. Metámero VIII amplio en la parte meso-posterior, campaniforme (fig. 18C, E), cercos simples, bífidos o trífidos (fig. 8C; fig. 18E), patas sin ornamentaciones (fig. 18A) Pseudosermyle

15′. Metámero VIII con lados paralelos (fig. 8A), cercos variables (fig. 8A), patas con carinas lobuladas Sermyle

Hembras:

1. Tres tarsómeros en cada pata (fig. 1C), I metámero abdominal no fusionado al tórax Timema

1′. Cinco tarsómeros en cada pata (fig. 1D), I metámero abdominal fusionado al tórax 2

2. Alados (fig. 13A) o braquípteros 3

2′. Ápteros (fig. 10A; fig. 15f; fig. 17A; fig. 19A) 5

3. Primer par de alas como tegminas y segundo par de alas bien desarrollado (fig. 13A) 4

3′. Primer y segundo par de alas reducidos a escamas Hypocyrtus

4. Tórax más ancho que largo, fémures deprimidos y dentados en el borde (fig. 14B), últimos metámeros abdominales con proyecciones laterales (fig. 6D; fig. 13B, C; fig. 14A) Prisopus

4′. Tórax más largo que ancho con espinas y fémures cilíndricos Perliodes

5. Cuerpo robusto (fig. 10A), pronoto con glándulas defensivas en el margen anterior (fig. 1B) 6

5′. Cuerpo delgado (fig. 15F; fig. 17A; fig. 19A), pronoto sin glándulas defensivas evidentes (fig. 1A) 7

6. Profémures deprimidos y curvados basalmente, placa subgenital corta, en ocasiones alcanza la mitad del segmento anal (fig. 5B); basitarso poco más largo que el segundo tarsómero Anisomorpha

6′. Profémures más o menos rectos, no deprimidos basalmente, placa subgenital alcanza el segmento anal y en ocasiones lo sobrepasa (fig. 5D), basitarso hasta dos veces el tamaño del segundo tarsómero Autolyca

7. Antenas más cortas que el profémur, flagelo con 4 o 5 antenómeros fusionados (fig. 4D) Parabacillus

7′. Antenas más largas que el profémur, flagelo con más de 4 o 5 antenómeros no fusionados (fig. 4C) 8

8. Meso y metafémures rectangulares en sección transversal 9

8′. Meso y metafémures trapezoidales en sección transversal 10

9. Placa subgenital apenas alcanza el X (fig. 6G), cercos largos y especializados (fig. 6G) Dubiophasma

9′. Placa subgenital no sobresale más allá del X (fig. 7H), cercos cortos y planos (fig. 7H) Ocnophila

10. Con órgano preopercular (fig. 3B, C) 11

10′. Sin órgano preopercular o reducido (fig. 17D; fig. 19E) 14

11. Metámero I más largo que la mitad del metatórax, cabeza con dos tubérculos, espinas o lóbulos semi-
triangulares 12

11′. Metámero I más corto que la mitad del metatórax, cabeza sin ornamentación o en ocasiones con un par de espinas pequeñas (fig. 15G) Bacteria

12. Cabeza subglobosa 13

12′. Cabeza deprimida Heteronemia

13. IX con márgenes laterales amplios, I tan largo como el metatórax Bostra

13′. IX estrecho en la parte posterior, I más largo que el metatórax Phanocles

14. Meso y/o metafémures con una o varias espinas ventroapicales prominentes (igual que en machos fig. 16C, D), cuerpo liso y brillante (fig. 17A) 15

14′. Meso y metafémures sin espinas ventroapicales prominentes, cuerpo liso y opaco (fig. 19A) 16

15. Mesofémures ensanchados, cabeza prognata, placa supraanal triangular (fig.
17C) Diapheromera (clave de subgéneros)

15′. Meso y metafémures ensanchados, cabeza ortognata y globosa, placa supraanal redondeada Megaphasma

16. Metámero VI sin lóbulos dorsolaterales, placa subgenital triangular con carina media (fig. 19E), cercos simples, rectos y amplios (fig. 8D; fig. 19D, E), patas sin ornamentaciones (fig. 19A) Pseudosermyle

16′. Metámero VI con lóbulos dorsolaterales (fig. 8B), placa subgenital corta, aguda y simple (fig. 8B), cercos cortos, simples y rectos (fig. 8B), patas con carinas lobuladas Sermyle

Clave para los subgéneros de Diapheromera Gray, 1835.

1. Un par de espinas en la cabeza y el poculum con un margen curvo e hinchado Rhabdoceratites

1′. Sin ornamentación en la cabeza, poculum diferente al anterior Diapheromera

Nota: para los géneros Bacteria, Bostra, Heteronemia y Phanocles, aún poco estudiados, es posible que la clave fallase al determinar algunas especies no consideradas en este trabajo, porque los autores que recientemente los revisaron no incluyeron a todas las especies del género.

Las superficies y carinas de las patas son nombradas tomando la siguiente posición: pata extendida perpendicular al cuerpo, la superficie superior es dorsal, la inferior es ventral, la superficie frontal es anterior o proximal y la superficie posterior es distal o posterior. Una carina en el centro de cualquiera de estas superficies es llamada carina media y se agrega el término (anterior, posterior, ventral o dorsal) de acuerdo con la superficie en la que se localiza, ejemplo: carina mesoventral.

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Figura 1. A, B. Posición de las glándulas defensivas señalada por las flechas: A, Pseudosermyle sp.: glándulas no visibles; B, Autolyca pallidicornis: glándulas visibles. C, D. Tarsos: C, Timema nevadense: tarso con 3 tarsómeros, tomada y modificada de Brock et al. (2016); D, Bacteria horni: tarso con 5 tarsómeros.

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Figura 2. Primer y segundo par de alas: A, Prisopus berosus ♂; B, Perliodes nigrogranulosus ♂, tomada y modificada de Brock et al. (2016).

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Figura 3. Genitales con vómer y órgano preopercular Bacteria horni: A, vista ventral ♂; B, vista lateral ♀; C, vista ventral ♀ placa subgenital recortada.

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Figura 4. A, B, Huevo de Pseudosermyle sp.: A, vista dorsal; B, vista lateral; C, D. Antenas, vista dorsal: C, Diapheromera (Diapheromera) velii velii: flagelo con más de 5 antenómeros no fusionados; D, Parabacillus palmeri: flagelo con 5 antenómeros fusionados, tomada y modificada de Brock et al. (2016). ao = ángulo opercular, h = eje altitudinal, l = eje longitudinal, mpl = eje de longitud micropilar, mpw = eje de amplitud micropilar, oph = eje de altitud opercular, opw = eje de amplitud opercular, w = eje de amplitud.

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Figura 5. Metámeros abdominales VIII-X en vista lateral. A, B. Anisomorpha paromalus: A, ♂; B, ♀. C, D. Autolyca pallidicornis: C, ♂; D, ♀. E, F. Hypocyrtus postpocitus: E, ♂; F, ♀; G, Timema nevadense ♂; H, Timema knulli ♀. Ci = cercos, Ll = lóbulos laterales, Lpl = lóbulos posterolaterales, P = poculum, Pid = proceso intradextral, Psg = placa subgenital.

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Figura 6. Metámeros abdominales VIII-X en vista lateral. A, B. Perliodes nigrogranulosus: A, ♂; B, ♀. C, D. Prisopus berosus: C, ♂; D, ♀. E, F. Heteronemia forcipata: E, ♂; F, ♀; G, Dubiophasma longicarinatum ♀; H. Parabacillus palmeri ♀. Ci = cercos, P. poculum, Psa = placa supraanal, Psg = placa subgenital.

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Figura 7. Metámeros abdominales VIII-X en vista lateral. A, B. Phanocles costaricensis: A, ♂; B, ♀. C, D. Bostra turgida: C, ♂; D, ♀. E, F. Bacteria horni: E, ♂; F, ♀. G, H. Oconphila integra: G. ♂; H, ♀. Ci = cercos, Op = órgano preopercular, P = poculum, Psg = placa subgenital.

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Figura 8. Metámeros abdominales VIII-X en vista lateral: A, Sermyle bidens ♂; B, Sermyle mexicana ♀; C, Pseudosermyle tridens ♂; D, Pseudosermyle sp. ♀; E, Megaphasma furcatum ♂; F, Megaphasma denticrus ♀. G, H. Diapheromera kevani: G, ♂; H, ♀. Ci = cercos, P = poculum, Psg = placa subgenital.

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Figura 9. Autolyca pallidicornis ♂: A, cuerpo, vista dorsal; B, cabeza, vista lateral; C, metámeros VIII-X, vista lateral [CNIN]. Ci = cercos, Lpl = lóbulos posterolaterales, P = poculum.

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Figura 10. Autolyca pallidicornis ♀: A, cuerpo, vista dorsal; B, cabeza, vista lateral. C, D. Metámeros VIII-X: C, vista lateral; D, vista ventral [CNIN]. Ci = cercos, Psg = placa subgenital.

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Figura 11. Prisopus berosus ♂: A, cuerpo, vista dorsal. B, C. Metámeros VI-X: B, vista dorsal; C, vista ventral [CNIN]. Ci = cercos, P = poculum.

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Figura 12. Prisopus berosus ♂: A, cuerpo, vista lateral, flechas indican lóbulos laterales del final del abdomen, pro y metafémures con el borde serrado; B, acercamiento de los metámeros VI-X, vista lateral; flechas indican lóbulos laterales [CNIN].

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Figura 13. Prisopus berosus ♀: A, cuerpo, vista dorsal. B, C. Metámeros VI-X: B, vista dorsal; C, vista ventral [CNIN]. Ci = cercos, Psg = placa subgenital.

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Figura 14. Prisopus berosus ♀: A, acercamiento de los metámeros VII-X, vista lateral, flechas indican lóbulos laterales; B, profémures, vista dorsal, flechas indican profémures con el borde serrado [CNIN].

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Figura 15. Bacteria horni. A-E. ♂: A, cuerpo, vista dorsal; B, cabeza, vista lateral. C-E. Metámeros VIII-X: C, vista ventral; D, vista lateral; E, vista dorsal. F-I. ♀: F, cuerpo, vista dorsal; G, cabeza, vista lateral. H-I. Metámeros VIII–X: H, vista lateral; I, vista dorsal [CNIN]. Car = carinas, Ci = cercos, Op = órgano preopercular, P = poculum, Psg = placa subgenital, V = vómer.

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Figura 16. Diapheromera (Diapheromera) tamaulipensis ♂: A, cuerpo, vista dorsal, flechas indican profémur curvado en la base, mesofémures ensanchados; B, cabeza, vista lateral; C, mesofémur ensanchado con espina ventroapical, vista ventral, flecha indica espina ventroapical del mesofémur; D, metafémur con espina ventroapical, vista lateral, flecha indica espina ventroapical del metafémur. E, F. Metámeros VIII-X: E, vista lateral; F, vista dorsal, flecha indica cercos curvados hacia adentro [CNIN]. Ci = cercos, P = poculum.

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Figura 17. Diapheromera (Diapheromera) velii velii ♀: A, cuerpo, vista dorsal, flecha indica profémur curvado en la base; B, cabeza, vista lateral, flecha indica parte deprimida de la cabeza. C-E. Metámeros VIII-X: C,vista dorsal; D, vista ventral, flecha indica esternito VII sin órgano preopercular; E, vista lateral [CNIN]. Ci = cercos, Psa = placa supraanal, Psg = placa subgenital.

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Figura 18. Pseudosermyle tridens ♂: A, cuerpo, vista dorsal, flechas indican profémur curvado en la base, patas sin ornamentaciones; B, cabeza, vista lateral. C-F. Metámeros VIII-X: C, vista dorsal, flecha indica VIII campaniforme; D, poculum, vista ventral; E, vista lateral, flecha indica VIII campaniforme; F, esternito X no modificado como vómer, vista ventral, flecha indica esternito X [CNIN]. Ci = cercos, P = poculum.

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Figura 19. Pseudosermyle sp. ♀: A, cuerpo, vista dorsal, flechas indican profémur curvado en la base, patas sin ornamentación; B, cabeza, vista lateral. C-E. Metámeros VIII-X: C, vista dorsal; D, vista lateral; E, vista ventral, flecha indica esternito VII sin órgano preopercular producido [CNIN]. Ci = cercos, Psg = placa subgenital.

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Figura 20. Morfología de Phasmatodea (Prisopus berosus ♀).

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Figura 21. Apéndice locomotor de Phasmatodea (con 5 tarsómeros); tomado de Seiler et al. (2006).

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Figura 22. Morfología externa de un huevo de Phasmatodea (Pseudosermyle sp.). A, vista dorsal; B, vista lateral.

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Figura 23. Final del abdomen de Phasmatodea (Diapheromera (Diapheromera) spp.). A ♂  tamaulipensis, B. ♀  velii velii.

 

Discusión

La lista formal de los Phasmatodea de México hasta este trabajo era inexistente, pues la mayoría de las compilaciones trataban con todo el orden: Gray (1835), Burmeister (1838), Westwood (1859) y Stål (1875a, b); o bien solo consideraron nuevos registros: Rehn (1904b), Hebard (1932), Vickery (1993, 1997), Zompro (2001a, b), Conle et al. (2007) y Gorochov y Berezin (2008); o simplemente no incluyeron los trabajos de nuestra región sobre Phasmatodea, como en Brock et al. (2016).

En la presente lista se evaluaron críticamente las especies que se distribuyen en el territorio nacional, y con ello se contribuye al conocimiento de la riqueza de Phasmatodea en México. No se describe la distribución geográfica por especie, por incompleta, ya que para ello hace falta examinar diversas colecciones entomológicas en el país y varias en el extranjero.

A continuación, se señalan las especies que se debieron eliminar o añadir a la lista de Brock et al. (2016):

Ocnophiloidea regularis (Brunner von Wattenwyl, 1907) se reportó para México, Brunner von Wattenwyl (1907) menciona que la hembra corresponde con la descripción salvo por presentar una talla mayor a la descrita para Trinidad y Tobago. Brock (1998) menciona que el ejemplar con localidad tipo en México fue destruido por un incendio. Oskar Conle en una comunicación personal, menciona que el género Ocnophiloidea se distribuye en Ecuador y Colombia y que no existe para el país. Dadas las condiciones anteriores se optó por dejar fuera de la lista a la especie O. regularis con el fin de no sobreestimar el número de especies de insectos palo en México.

En la revisión de Hennemann y Conle (2012a), el ejemplar de Paracalynda picta Brunner von Wattenwyl, 1907 (Bacunculus pictus Brunner von Wattenwyl, 1907), que proviene de Atoyac, Veracruz, está determinado erróneamente según estos autores; en realidad pertenece al género Pseudosermyle Caudell, 1903. Entonces, se eliminó de la lista el registro de P. picta pues se trataba del único ejemplar con localidad dentro de México. No obstante, existe la posibilidad de que el género Paracalynda Zompro, 2001 se distribuya en México como mencionan estos autores.

Conle et al. (2011) mencionan que el ejemplar de Libethra brevipes Brunner von Wattenwyl, 1907, con localidad en México, está deteriorado por parásitos, y difiere de Libethra Stål, 1875 por el ensanchamiento medial del mesotórax, metámero I un poco más largo (al menos la mitad de la longitud del metanoto), meso y metafémures más engrosados y los tarsos muy cortos. Además de esto, tales autores argumentan que la distribución en México para Libethra Stål, 1875 es poco probable y, en varios aspectos que no mencionan, el ejemplar presenta más similitudes con el género Hypocyrtus Redtenbacher, 1908.

Por las razones anteriores que explican Conle et al. (2011), quienes definen y delimitan con precisión a Libethra Stål, 1875, se consideró pertinente excluir a L. brevipes de la lista. Aun así, queda pendiente una revisión con respecto a esta especie, que sólo se conoce de ese ejemplar, y que está parcialmente destruido.

Con la especie Heteronemia mexicana Gray, 1835 ocurrió un problema de inexactitud geográfica y de determinación errónea: se conocen 2 ejemplares con registro para “México”, el primer ejemplar fue utilizado por Gray (1835) quien describió a Heteronemia mexicana con localidad tipo en México, pero Zompro (2001b) menciona que la localidad del holotipo de Gray probablemente es errónea. En su revisión más reciente sobre el género, este autor menciona que el segundo ejemplar topotipo no pertenece a Heteronemia Gray, 1835, sino a Pseudosermyle Caudell, 1903; este segundo organismo proviene de la colección de Brunner v. Wattenwyl y aclara que fue determinado erróneamente como H. mexicana.

Debido a la confusión que el holotipo y el topotipo provocan, y a que no se pudo observar el material pues se encuentra en el Museo de Historia Natural de Londres, se eliminó provisionalmente de la lista, para evitar errores y sobreestimación de las especies registradas de México. Se sugiere revisar nuevamente Heteronemia Gray 1835, porque en la revisión de Zompro (2001b) solo se considera 2 de 20 especies de Heteronemia, entonces las especies restantes del género quedan pendientes de revisión; algunas de éstas se distribuyen en México. Por ello es importante una revisión más exhaustiva del género.

El género Diapheromera Gray, 1835 contiene 2 subgéneros: D. (Diapheromera) Gray, 1835 y D. (Rhabdoceratites) Rehn y Hebard, 1912. En Caudell (1913), Rehn y Hebard (1909, 1912) y Hebard (1932) Rhabdoceratites se considera un género independiente a Diapheromera Gray, 1835, pero estrechamente relacionado con éste. Sin embargo, Hebard (1934) menciona que Rhabdoceratites es un sinonónimo de Diapheromera Gray, 1835, por considerar que carece de caracteres que lo sustenten como un género distinto. Sin embargo, Zompro (2001a) menciona que la cabeza más globosa y su ornamentación son de importancia taxonómica, y por tal motivo mantuvo a D. (Rhabdoceratites) y D. (Diapheromera) a nivel de subgénero. Además, este autor menciona que la carencia de espinas en la cabeza es común en los machos del género Diapheromera. Por lo anterior es complicado asignar a las especies en uno u otro subgénero, porque en algunas solo un sexo muestra espinas en la cabeza.

Dada toda esta información se considera que es confuso dividir al género Diapheromera Gray, 1835 en 2 subgéneros. Por lo tanto, se sugiere la revisión de todas las especies del género para aclarar la separación del género en 2 posibles subgéneros. No obstante, aquí presentamos una clave para diferenciarlos y determinarlos.

A continuación explicamos 5 casos particulares de inclusión en nuestra lista: 1) Diapheromera (Rhabdoceratites) covilleae Rehn y Hebard, 1909 es una especie descrita para los EUA, aunque Hebard (1932, 1942) amplía su distribución al estado de Coahuila, México. A partir de lo cual podemos inferir que su distribución puede incluir al norte de México. No obstante, en la lista revisada de Brock et al. (2016) no está incluida. Con la evidencia de Hebard decidimos incluirla en la lista de Phasmatodea de México. 2) Hebard (1932) registró a Diapheromera (Diapheromera) velii para los estados de Coahuila y Tamaulipas, México. Más tarde Hebard (1937) describió Diapheromera (Diapheromera) velii eucnemis proveniente de Texas, EUA; posteriormente, Hebard (1942) amplió su área de distribución al estado de Nuevo León, México. Sin embargo, en la lista de Brock et al. (2016) se omiten ambos registros para el país. Nosotros, con base en la evidencia, agregamos ambas subespecies a la lista que se presenta en este trabajo. 3) En el trabajo de Mariño y Márquez (1983) la especie Autolyca pallidicornis Stål, 1875 fue recolectada en Chiapas, México, pero se omitió en la lista de Brock et al. (2016), de tal forma que la añadimos a nuestra lista. 4) Vickery (1993) revisó al género Timema Scudder, 1895, e incrementó la distribución de Timema podura Strohecker, 1936 al estado de Baja California, México. Brock et al. (2016) en su lista la omitieron para México. Nosotros la añadimos a la lista. 5) En cuanto a la especie Parabacillus coloradus (Scudder, 1893), registrada para los estados de Aguascalientes y Michoacán y cuyos ejemplares están depositados en la Colección Entomológica de la Universidad Autónoma de Aguascalientes (Escoto-Rocha et al. 2013). Brock et al. (2016) lo desconocían, por consiguiente la incorporamos a la lista de Phasmatodea de México.

Barrientos-Lozano et al. (2008) citan a Megaphasma denticrus (Stål, 1875) y Diapheromera (Diapheromera) femorata (Say, 1824) para la Reserva de la Biosfera El Cielo, al sur del estado de Tamaulipas. En la lista de Brock et al. (2016) fueron omitidas ambas especies, por consiguiente, se incorporaron a la lista de Phasmatodea de México. Por último, se ubicó a Hypocyrtus Redtenbacher, 1908 en Hesperophasmatini Bradley y Galil, 1977, de acuerdo con Hennemann et al. (2016).

Agradecimientos

A Oskar Conle, Bruno Kneubühler y Paul D. Brock por su ayuda en la taxonomía de Phasmatodea. A la Colección Nacional de Insectos (CNIN-IB-UNAM), en particular a Enrique Mariño Pedraza, María Cristina Mayorga Martínez y Alejandro Zaldivar Riverón por brindar facilidades para revisar la CNIN. A Arturo Arellano Covarrubias por ayudarnos en la toma de fotografías de los ejemplares de Phasmatodea. Al Laboratorio de Microscopia y Fotografía de la Biodiversidad II, del IB-UNAM (Susana Guzmán Gómez) por la asistencia técnica recibida en la toma de fotografías de huevos de Phasmatodea. A Isabel Vargas Fernández por su asesoría en el arreglo de las imágenes utilizadas en este trabajo. Por último, Enrique González Soriano, Iván Castellanos Vargas, Moisés Armando Luis Martínez, Alicia Rojas Ascencio, Omar Ávalos Hernández y Marysol Trujano Ortega por la lectura de un documento preliminar que después constituyó la base de este trabajo. Al Conacyt por la beca 11107, según exp. 4161 CVU 5599426 de Ayudante de Investigador nivel 3, que ha permitido a ULM trabajar en el Museo de Zoología de la Facultad de Ciencias en el desarrollo de investigaciones con Phamatodea. JLB agradece la beca sabática a DGAPA-UNAM y su complemento Conacyt, que le permitieron concluir el presente trabajo en la Smithsonian Institution.

Referencias

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